La Hematoxilina (C.I. 75290) es un compuesto que se obtiene de la planta leguminosa Haematoxylum campechianum L., conocida también con el nombre de palo leguminosa Haematoxylum de palo de Campeche. Campeche. Es un producto natural que al ser oxidado ser oxidado constituye una substancia de color morado oscuro denominada hemateína. Se utiliza en histología para teñir los componentes aniónicos (ácidos ácidos)) de los tejidos tejidos,, a los que da una coloración violeta. Tiñe intensamente los núcleos de las células células,, dado que estos contienen ácidos nucleicos ricos en radicales ácidos ácidos.. Tal como se obtiene de la planta e incluso luego de sufrir el proceso de oxidación oxidación,, su capacidad de tinción es muy limitada. Por lo tanto, debe combinarse con iones metálicos,, especialmente las sales de hierro (III) o aluminio (II), que actúan como metálicos mordientes.. mordientes Si bien la hematoxilina es una sal neutra neutra,, suele ser denominada como un colorante básico,, ya que el componente cromógeno reside en el complejo catiónico ( básico básico básico)) de la misma. Es de notar que la tinción histológica por hematoxilina no indica tanto la constitución química de los componentes celulares celulares,, sino la densidad de cargas eléctricas negativas de los mismos. •
AZUL DE TOLUIDINA
Colorante que tiñe estructura basófilas, tales como la cromatina. Se puede comportar como colorante ortocromático (tiñe de color azul) o metacromático (tiñe de color violeta-rojo), dependiendo del pH y de la naturaleza química de la sustancia teñida. Como colorante ortocromático, se usa frecuentemente para teñir tejido nervioso, donde tiñe la heterocromatina y los gránulos de Nissl (acúmulos de cisternas de retículo endoplásmico rugoso de los somas neuronales, así como las fibras nerviosas amielínicas y células de glía. También se utiliza para la tinción de cortes semifinos. semifinos. El azul de toluidina tiñe metacromáticamente las estructuras ricas en proteoglucanos sulfatados, como el heparán sulfato, presente - por ejemplo - en el cartílago joven (condroblastos y matriz inmadura) y en los gránulos de las células cebadas.
RESULTADOS: Ortocromasia: las estructuras basófilas aparecen teñidas de color azul.
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GOMORI: PLATA
Técnica que utiliza la reducción de nitrato de plata, que se deposita sobre estructuras argirófilas. Puede usarse sola o en combinación con otras tinciones nucleares o citoplasmáticas.
RESULTADOS: las estructuras argirófilas, como las fibras de reticulina (o reticulares) se tiñen de negro.
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HEMATOXILINA – EOSINA
Esta técnica utiliza dos colorantes: en primer lugar los cortes se someten a la acción de la hematoxilina, colorante básico, que se une a cualquier sustancia que tenga grupos ácidos, tales como los grupos fosfato del ADN y a las proteínas nucleares que poseen carga negativa. A continuación, los cortes se someten a la acción de la eosina, colorante débilmente ácido, que colorea a las estructuras básicas. RESULTADOS: las estructuras basófilas, como los núcleos, se tiñen de color azul con la hematoxilina, mientras que la eosina tiñe de rosa más o menos intenso estructuras acidófilas, como las fibras de colágeno.
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PAS (REACCIÓN DEL ÁCIDO PERYÓDICO- REACTIVO DE SCHIFF)
La reacción de PAS nos revela todo tipo de carbohidratos (polisacáridos, como el glucógeno, mucopolisacáridos, glucolípidos, glucoproteínas etc.). Se basa en la reacción con el reactivo de Schiff de los grupos aldehído liberados de los grupos vic-glicol presentes en los carbohidratos tras su oxidación con ácido peryódico. El reactivo de Schiff contiene fucsina básica (o pararrosanilina), que en solución ácida y en presencia de SO2 da lugar a una forma no coloreada (ácido N-sulfónico). Este reactivo reacciona con los grupos aldehído libres formando un compuesto insoluble de color púrpura. Esta técnica se utiliza sobre cortes obtenidos de tejido incluido en parafina o de tejido congelado.
RESULTADOS: carbohidratos en color púrpura.
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TRICRÓMICO DE GOLDNER (Masson-Goldner)
Las coloraciones tricrómicas usan dos o más colorantes para teñir diferencialmente las diversas estructuras histológicas, según su basofilia / acidofilia o por su apetencia por un colorante específico. El método del tricrómico de Goldner (también conocido como Masson-Goldner) usa hematoxilina de Groat, y los colorantes rojo fucsina Ponçeau (xilidina Ponçeau, o Ponçeau 2R), naranja G (en solución de ácido fosfomolíbdico) y verde luz (solución acética). Fue diseñado por Masson y modificado por Goldner para distinguir las células de la matriz conjuntiva.
RESULTADOS: estructuras basófilas (como las cromatina) de color pardo-marrón a negro, las estructuras débilmente acidófilas de rojo a naranja y las fuertemente acidófilas (como las fibras de colágeno) de azul a verde. Tinción de Mallory: una técnica para el estudio del tejido conjuntico. Los cortes se tiñen con fucsina ácida,solución de azul-naranja G de anilina y ácido f osfotungstico. Las fibras de colágeno aparecen en azul, la fibroglia, neuroglia y fibras musculares aparecen en rojo y las fibrillas de elastina en naranja. También llamada tinción tricrómica de Mallory
La tinción de Wright es una tinción de tipo Romanowsky. Una tinción de Romanowsky consiste en azul de metileno y sus productos de oxidación, así como eosina Y o eosina B.
La acción combinada de estos colorantes produce el efecto Romanowsky que da una coloración púrpura a los núcleos de los leucocitos y a los gránulos neutrofílicos y da color rosado a los eritrocitos. Los componentes de este efecto son el azul B y la eosina Y. Las propiedades de tinción de Romanowsky dependen del enlace de los colorantes a las estructuras químicas y de las interacciones del azul B y la eosina Y. Los agrupamientos de ácidos nucleicos, las proteínas de los núcleos celulares y el citoplasma inmaduro reactivo, fijan el azul B, colorante básico. La eosina Y, colorante ácido, se fija a los agrupamientos básicos de las moléculas de hemoglobina y a las proteínas básicas.
TINCION AZAN DE HEINDENHAIN: se obtiene tres colores diferentes: azul oscuro en los núcleos de la celula, rojo en el musculo, queratina y citoplasma celular y azul claro en el mucinogeno y colageno, osea en el tejido conjuntivo.
ORCEINA (TRADUCIDA) Orcein es extraído de dos especie de liquenes, Rocella tinctoria y Lecanora parella. Orcein también está disponible en una forma sintética, pero la forma natural es preferida para el análisis de cromosoma, porque esto da el mejor contraste. Orcein es usado en la forma de una solución del 1 % en el ácido acético del 45 %. Esta solución está preparada por verter 55 mL el hervor del ácido glacial acético más de 1 g orcein el polvo. La solución es refrescada, 45 mL del agua destilada añadida, y filtrada. Esta solución es inestable y debería estar preparada fresca antes del empleo. Ranvier en 1889, indica la orceina para teñir cilindro – ejes, neuronas y neuroglia. Tiñe la elastica con el picrocaminato amoniacal, mezcla acido picrico, carmin y amoniaco, el acido picrico tiñe de amarillo la elastica. Lacour en 1941 encontro un nuevo uso para la orceina, la tecnica de la aceto – orceina para fijar y colorear los cromosomas y estiaria el cariotipo: numero, forma, defectos y deformidades de los cromosomas. Shikata en 1974 demostro que teñia el antigeno de superficie de la hepatitis B ( HbsAg).
http://www.medicinabuenosaires.com/revistas/vol63-03/5/editorial-orceina.PDF http://books.google.com.mx/books?id=S_NHxeSLJoAC&lpg=PA6&dq=TINCIONES %20HISTOLOGICAS&hl=es&pg=PA6#v=onepage&q&f=false
http://books.google.es/books?id=NXykqDYRnWcC&lpg=PP1&dq=fundamentos%20de %20quimica%20analitica&pg=PP1#v=onepage&q&f=false
